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Laboratorio Integrado de Biología de la Reproducción
Código: 42949Créditos: 9
| Titulación | Tipo | Curso |
|---|---|---|
| Citogenética y Biología de la Reproducción | OP | 1 |
Profesor/a de contacto
- Nombre :
- Carme Nogues Sanmiquel
- Correo electrónico :
- carme.nogues@uab.cat
Equipo docente
- Ignasi Roig Navarro
- Zaida Sarrate Navas
- Elena Ibañez De Sans
- Andreu Blanquer Jerez
Idiomas de los grupos
Puede consultar esta información al final del documento.
Prerrequisitos
Esta asignatura no tiene ningún prerequisito.
Objetivos
El módulo "Laboratorio Integrado de Biología de la Reproducción" tiene como objetivo dar las herramientas básicas al alumnado para que puedan adquirir la capacidad de desarrollar las tareas que se llevan a cabo tanto en los centros de Reproducción Asistida, como en los laboratorios de investigación e industriales de cultivos celulares.
Con el submódulo 1 "Cultivo de células madre embrionarias", el alumnado adquirirá la habilidad de trabajar en un laboratorio de cultivos. Aprenderá las normativas y se habituará a trabajar en condiciones de esterilidad. Aprenderá las técnicas más básicas de detección de proteínas y adquirirá la capacidad de utilizar el microscopio tradicional, el invertido de luz blanca y el microscopio de fluorescencia. Aprendrán a diferenciar entre ESC pluripotentes y diferenciadas.
Con el submódulo 2 "Hibridación in situ fluorescente (FISH) en espermatozoides" el alumnado, a través de la técnica de FISH, aprenderá a analizar las anomalías cromosómicas en espermatozoides de una muestra de semen y a hacer una valoración clínica de la misma.
Con el submódulo 3 "Cultivo de ovocitos y embriones", el alumnado adquirirá la destreza para trabajar en un laboratorio de biología de la reproducción. Aprenderá a obtener y manipular ovocitos y embriones, activar ovocitos y aislar blastómeros.
Con el submódulo 4 "Actualización en técnicas histológicas y citológicas", el alumnado aprenderá las técnicas básicas de histología es decir a incluir, cortar, teñir muestras y, en estas, detectar proteínas, tipos celulares y niveles de organización tisular.
Con el submódulo 5 "Microscopía de Barrido Láser Confocal", el alumnado aprenderá los requerimientos básicos para la manipulación de este tipo de microscopios y se describirán sus ventajas y limitaciones.
Resultados de aprendizaje
- CA16 (Planificar la gestión de laboratorios de investigación y laboratorios clínicos en el área de la biología de la reproducción, atendiendo a criterios de calidad y seguridad.) Planificar la gestión de laboratorios de investigación y laboratorios clínicos en el área de la biología de la reproducción, atendiendo a criterios de calidad y seguridad.
- CA17 (Diseñar experimentos científicos en el ámbito del laboratorio de biología de la reproducción, seleccionando metodologías y herramientas adecuadas para responder a hipótesis de investigación.) Diseñar experimentos científicos en el ámbito del laboratorio de biología de la reproducción, seleccionando metodologías y herramientas adecuadas para responder a hipótesis de investigación.
- KA21 (Relacionar las bases celulares y moleculares de la biología de la reproducción con los procedimientos experimentales aplicados en mamíferos de laboratorio.) Relacionar las bases celulares y moleculares de la biología de la reproducción con los procedimientos experimentales aplicados en mamíferos de laboratorio.
- SA22 (Aplicar técnicas de cultivo y caracterización celular en el laboratorio de biología de la reproducción.) Aplicar técnicas de cultivo y caracterización celular en el laboratorio de biología de la reproducción.
- SA23 (Aplicar los principios de calidad, bioseguridad y trazabilidad en la realización de actividades, en el uso de recursos y en el seguimiento de los flujos de trabajo propios de un laboratorio integrado de biología de la reproducción.) Aplicar los principios de calidad, bioseguridad y trazabilidad en la realización de actividades, en el uso de recursos y en el seguimiento de los flujos de trabajo propios de un laboratorio integrado de biología de la reproducción.
- SA24 (Analizar los datos derivados de la actividad investigadora en un laboratorio integrado de biología de la reproducción.) Analizar los datos derivados de la actividad investigadora en un laboratorio integrado de biología de la reproducción.
- SA25 (Demostrar habilidades comunicativas, en sus distintos formatos orales y escritos, para comunicar los resultados obtenidos en un laboratorio clínico o de investigación de biología de la reproducción.) Demostrar habilidades comunicativas, en sus distintos formatos orales y escritos, para comunicar los resultados obtenidos en un laboratorio clínico o de investigación de biología de la reproducción.
Contenidos
Submódulo 1: Cultivo de células madre embrionarias (ESC)
- Cultivo de STO (feeders)
- Inactivación de STO
- Cocultivo de ESC sobre STO
- Detección de pluripotencia (inmunofluorescencia)
- Diferenciación de ESC
- Detección de diferenciación (inmunofluorescencia)
- Captura i análisis de imágenes de los diferentes tipos celulares y de la immunofluorescencia
Submódulo 2: Hibridación in situ fluorescente en espermatozoides
- Técnica de hibridación in situ fluorescente en una muestra de semen fijada
- Valoración de la hibridación
- Análisis de las anomalías cromosómicas de la muestra
Submódulo 3: Cultivo de ovocitos y embriones
- Obtención y cultivo de embriones de ratón
- Partición embrionaria
- Obtención y maduración de ovocitos de ratón
- Activación de ovocitos de ratón
Submódulo 4: Actualización en técnicas histológicas y citológicas
- Desarrollo de la técnica histológica: inclusión y microtomía
- Tinciones diversas en cortes histológicos de ovario y / o testículo
- Citometría de flujo y su uso en investigación
- Visualización microscópica y digitalización de imágenes
- Procesado de imágenes mediante Photoshop / Image J - FIJI
Submódulo 5: Microscopía de barrido láser confocal
- Fundamentos dela Microscopía de Fluorescencia y Confocal
- Preparación de muestras para fluorescencia
- Captación de la imagen en el Microscopio Confocal
- Procesamiento de las series
Actividades formativas y Metodología
| Título | Horas | ECTS | Resultados de aprendizaje |
|---|---|---|---|
| Microscopio de rastreo láser confocal | 10 | 0,4 | CA16, SA22, SA23 |
| Actualización en técnicas histológicas y citológicas | 20 | 0,8 | CA16, SA22, SA23 |
| Preparación de la composición fotográfica | 8 | 0,32 | CA17, SA24, SA25 |
| Cultivo de ovocitos y embriones | 10 | 0,4 | CA16, SA22, SA23 |
| Tutorias personalizadas | 30 | 1,2 | KA21, SA24 |
| Hibridación in situ fluorescente en espermatozoides | 5 | 0,2 | CA16, SA22, SA23 |
| Preparación de los informes de prácticas | 10 | 0,4 | SA24, SA25 |
| Preparación de los problemas y casos prácticos | 10 | 0,4 | CA17, SA24, SA25 |
| Resolución de casos prácticos y problemas | 8 | 0,32 | CA17, KA21, SA25 |
| Cultivo de células madre embrionarias | 15 | 0,6 | CA16, SA22, SA23 |
| Estudio | 73 | 2,92 | CA16, CA17, KA21, SA22, SA23, SA24 |
| Realización de una composición fotográfica utilizandoel programa Photoshop | 8 | 0,32 | CA17, KA21, SA25 |
| Elalboración de informes de los resultados de las prácticas | 8 | 0,32 | CA17, KA21, SA25 |
Esta asignatura es básicamente práctica.
En todos los submódulos, excepto en el de microscopía de barrido láser confocal, el alumnado trabajará en parejas bajo la tutela de un profesor.
En el submódulo de cultivo de células madre embrionarias el alumnado debe adquirir la capacidad de trabajar en condiciones estériles.
En el submódulo de FISH en espermatozoides el alumnado aprenderá a procesar muestras de semen para aplicar metodologías de FISH y a identificar anomalías cromosómicas.
En el submódulo de cultivo de ovocitos y embriones las clases prácticas están diseñadas para que el alumnado adquiera las habilidades necesarias para manipular ovocitos y embriones.
En el submódulo de histología el alumnado se familiarizarán con las técnicas más utilizadas en histología.
En el submódulo de Microscopía de barrido láser confocal, el alumnado deberá trabajar en grupos de aproximadamente 6 personas. Esta práctica se realiza en el Servicio de Microscopía, utilizando los microscopios de barrido láser confocal de este Servicio.
Evaluación
Actividades de evaluación continuada
| Título | Peso | Horas | ECTS | Resultados de aprendizaje |
|---|---|---|---|---|
| Entrega de informes | 67% | 2 | 0,08 | CA17, KA21, SA24 |
| Adquisición de destreza en el laboratorio de cultivo de celulas madre | 6% | 1 | 0,04 | CA16, CA17, SA22, SA23, SA24, SA25 |
| Pruevas individuales | 8% | 4 | 0,16 | CA16, CA17, KA21, SA24, SA25 |
| Resolución de problemas o casos prácticos | 10% | 1 | 0,04 | CA16, CA17, KA21, SA23, SA24 |
| Adquisición de destreza en la utilitzación de un micrsocopio confocal | 2% | 1 | 0,04 | CA17, KA21, SA22, SA23, SA24, SA25 |
| Adquisición de destreza en el laboratorio de histologia | 7% | 1 | 0,04 | CA17, KA21, SA23, SA24, SA25 |
El módulo está formado por 5 submódulos, cada uno de ellos con una dedicación y por tanto un peso específico dentro del módulo. En la tabla siguiente encontraréis el resumen de las horas de cada submódulo y su peso en la nota final del módulo:
| hores | % | ||
| 1 | Cultivo ESC | 15 | 25 |
| 2 | FISH en espermatozoides | 5 | 8 |
| 3 | Cultivo de ovocitos y embriones | 10 | 17 |
| 4 | Actualitzación en técnicas histològicas y citológicas | 20 | 33 |
| 5 | Microscopia de rastreo laser confocal | 10 | 17 |
| TOTAL | 60 | 100 |
Las actividades de evaluación programadas son:
Submódulo 1. Cultivo de células madre embrionarias. Este submódulo tiene un peso del 25% de la nota de módulo. El sistema de evaluación se organiza en dos apartados: 1) la actitud y destreza adquirida en el laboratorio (15%) y 2) y realización de un examen escrito (85%) .
Submódulo 2. Hibridación in situ fluorescente en espermatozoides. Este submódulo tiene un peso del 8% de la nota de módulo. Para la evaluación del submódulo se tendrá en cuenta la entrega del informe de resultados (100%).
Submódulo 3. Cultivo de ovocitos y embriones. Este submódulo tiene un peso del 17% de la nota del módulo. Para la evaluación del submódulo se tendrá en cuenta el informe de los resultados obtenidos (100%).
Submódulo 4. Actualización en técnicas histológicas y citológicas. Este submódulo tiene un peso del 33%de la nota del módulo. El sistema de evaluación se organiza en tres apartados: 1) Aprovechamiento delas sesiones prácticas (20%), 2) entrega individual de un informe y cuestionarios (40%) y 3) realización de una composición fotográfica utilizando el programa Photoshop / Image J - FIJI (40%).
Submódulo 5. Microscopía de barrido láser confocal. Este submódulo tiene un peso del 17% de la nota del módulo. El sistema de evaluación se organiza en dos apartados: 1) Aprovechamiento de las sesiones prácticas (10%) y 2) realización de un examen escrito (90%).
La nota final se calculará teniendo en cuenta el porcentaje de los diferentes submódulos. Para superar el módulo deberá obtenerse una puntuación mínima de 5 puntos de un máximo de 10 puntos posibles. Para que los diferentes submódulos hagan media, se debe obtener una calificación mínima ≥4 en cada uno de los submódulos. Notas inferiores a ≤3,99 en algún del submódulos obligará al alumnado a presentarse a un examen final de todos los submódulos.
Para participar en la recuperación, el alumnado debe haber sido previamente evaluado en un conjunto de actividades cuyo peso equivalga a un mínimo de dos terceras partes de la calificación total de la asignatura o módulo. Por tanto, el alumnado obtendrá la calificación de \"No Evaluable\" cuando las actividades de evaluación realizadas tengan una ponderación inferior al 67% en la calificación final.
El profesorado responsable de cada uno de los submódulos de este módulo práctico indicará al alumnado qué uso puede hacer de la inteligencia artificial.
Bibliografía
- Barnes, David W. & Mather, Jennie P. (1998). Animal cell culture methods.Academic Press
Disponible en paper a la biblioteca
- Barnes, David W. [i altres]. (1998). Animal cell culture methods. Academic Press Barn
Disponible en línia
- Behringer, Richard. (2014). Manipulating the mouse embryo : a laboratory manual. (4th ed.) Cold Spring Harbor Laboratory Press
Disponible en paper a la biblioteca
- Freshney, R. Ian. (2010). Culture of animal cells : a manual of basic technique and specialized applications. (6th ed.) Wiley-Blackwell
Disponible en paper a la biblioteca
- Freshney, R. Ian. (2016). Culture of animal cells : a manual of basic technique and specialized applications. (7th ed.) Wiley-Blackwell
Disponible en línia
- Griffiths, J. B. & Doyle, A. (1998). Cell and tissue culture : laboratory procedures in biotechnology. John Wiley & Sons
Disponible en paper a la biblioteca
- Suvarna, S. Kim & Layton, Christopher & Bancroft, John D. (2013). Bancroft's theory and practice of histological techniques. (7th ed.) Churchill Livingstone Elsevier
Disponible en línia
Software
Procesador de imágenes de programario libre Image J - FIJI.
Imaris Viewer (versió lliure del Imaris; Oxford Instruments)
Grupos e idiomas de la asignatura
La información proporcionada es provisional hasta el 30 de noviembre. A partir de esta fecha, podrá consultar el idioma de cada grupo a través de este enlace. Para acceder a la información, será necesario introducir el CÓDIGO de la asignatura
| Tipo de docencia | Grupo | Idioma | Semestre | Turno |
|---|---|---|---|---|
| (PLABm) Prácticas de laboratorio (máster) | 1 | Catalán/Español | segundo cuatrimestre | manaña-mixto |
| (SEMm) Seminarios (màster) | 1 | Catalán | segundo cuatrimestre | manaña-mixto |